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超螺旋 DNA 分子量標(biāo)準(zhǔn)00uL多少錢

超螺旋 DNA 分子量標(biāo)準(zhǔn)00uL多少錢

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超螺旋 DNA 分子量標(biāo)準(zhǔn)00uL多少錢是一種在較高溫度下保存 RNA 樣品的非凍型無毒溶液,它能 迅速滲入細(xì)胞內(nèi),通過高效抑制 RNase 的活性而保存 RNA 的完整性。

超螺旋 DNA 分子量標(biāo)準(zhǔn)00uL多少錢 詳細(xì)資料

注意事項(xiàng):
超螺旋 DNA 分子量標(biāo)準(zhǔn)00uL多少錢● 溶液PE *次使用前請按瓶上標(biāo)簽加入4 倍體積的無水乙醇,即5 ml 溶液PE 中加入60 ml 無水乙醇,20 ml 溶液PE 中加入80 ml 無水乙醇,使用后立即蓋緊蓋子。
● 本產(chǎn)品對電泳使用的Agarose 種類沒有嚴(yán)格限制,可以使用普通Agarose 。為了保證回收DNA 的質(zhì)量和DNA 回收效率,希望使用高純度的Agarose ,但沒有必要一定要使用低熔點(diǎn)的Agarose 等。
● 電泳時(shí)請使用新鮮配制的TAE 電泳緩沖液,以免影響電泳及回收效果。
● 請適當(dāng)延長電泳時(shí)間,在條帶分離清晰后進(jìn)行切膠回收,以免回收到多余雜帶。
● 為提高DNA 回收收率,切膠時(shí)應(yīng)盡量除去多余的膠塊。
● 本試劑盒純化柱的DNA 吸附能力強(qiáng)。但如果DNA 濃度小,或DNA 初始量少,回收率將會偏低。
● 溶液Eluent(0 mM Tris-HCl, pH 8.5)中不含EDTA,其收集的DNA 片段可直接用于各種酶促反應(yīng)等,不會影響后續(xù)試驗(yàn)。
● 為了保證回收效率,請不要使用未調(diào)整pH 值的超純水洗脫目的片段。

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00uL

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● 請嚴(yán)格按照操作步驟操作。

問:常用的DNA 濃度及純度檢測方法有哪些?
超螺旋 DNA 分子量標(biāo)準(zhǔn)00uL多少錢答:回收得到的DNA 片段可用瓊脂糖凝膠電泳和紫外分光光度計(jì)檢測濃度與純度。瓊脂糖凝膠電泳通過對比定量的Marker 來定量濃度;紫外分光檢測OD260/280 比值,OD260/280 比值在.7-.9 之間說明所得  DNA  純度較好,如果洗脫時(shí)不使用溶液Eluent而使用去離子水,比值會偏低,因?yàn)閜H 值和離子存在會影響光吸收值,但不表示純度低。

問:長片段回收時(shí)應(yīng)注意哪些問題?
答:超螺旋 DNA 分子量標(biāo)準(zhǔn)00uL多少錢當(dāng)DNA 片段長度較長(5   kb 以上)時(shí),回收效率會有所下降,這是DNA 切膠回收時(shí)的常見現(xiàn)象。此時(shí)建議按以下方法解決問題:
    適當(dāng)增加待回收DNA 樣品的點(diǎn)樣量;
    2 由于長片段DNA 不易從樹脂上洗脫下來,建議洗脫兩次,可以提高洗脫效率;
    3 減少操作過程中對長片段DNA 的物理損傷,如混合振蕩操作不要過于劇烈,切膠時(shí)不要將DNA 長時(shí)間暴露在紫外等下。

操作步驟:
  超螺旋 DNA 分子量標(biāo)準(zhǔn)00uL多少錢切取含有目的DNA 片段的瓊脂糖凝膠條帶。
   ● 盡量切除不含有目的DNA 部分的凝膠,減少凝膠體積,提高DNA 回收率。
   ● 切膠時(shí),請使用長波長UV  (360 nm )光盒。且不要將DNA 長時(shí)間暴露在紫外燈下,以防DNA 損傷。
2  稱取凝膠的重量近似地確定其體積。
   ● 凝膠重量的稱量方法:取.5 ml 離心管電子天平稱初質(zhì)量,切膠裝在離心管后稱終質(zhì)量,兩者差即為膠的質(zhì)量。不同離心管的重量可能有差異,因此,每個(gè)離心管的重量需單獨(dú)稱量。
3  按照每00 mg 瓊脂糖凝膠對應(yīng)00 µl 溶液BD 的比例,向離心管中加入溶液BD。
4  50 ℃水浴7-0min,直至凝膠*溶化。期間需要振蕩混合3 次。
   ● 瓊脂糖必須*融化,以免堵塞柱子,嚴(yán)重影響DNA 段的回收效率。
   ● 如果總體積大于500 µl,可適當(dāng)增加溶膠時(shí)間。
   ● 若此時(shí)溶液變紅,可加0 µl 3M NaAC  (pH 5.2)。
5  將步驟4 所獲溶液置于DNA 純化柱中,靜置2min 。
   ● 膠塊*溶解后將膠溶液溫度降至室溫再上柱,因?yàn)榧兓谳^高溫度時(shí)結(jié)合DNA  的能力較弱。
6  2,000 rpm 離心min。若溶液量大于DNA 純化柱的容積,可分兩次離心,棄濾液。
   ● 此時(shí)DNA 被吸附于DNA 純化柱中的硅膠膜上。
7  加入500 µl 溶液BD。2,000 rpm,  離心min,棄濾液
8  加入500 µl 溶液PE。2,000 rpm,  離心min,棄濾液。
   ● 溶液PE 初次使用前用無水乙醇按: 4 稀釋,即含80% 乙醇。
   ● 此步驟的作用是將硅膠膜上吸附的蛋白、鹽等雜質(zhì)洗脫,以獲得高質(zhì)量DNA 段。
9  加入500 µl 溶液PE。2,000 rpm,  離心min,棄濾液。
0 2,000 rpm 離心  3min ,以*去除純化柱中的液體。
   ● 此步驟的作用是去除殘留乙醇,避免殘留乙醇影響后續(xù)酶促反應(yīng)。同時(shí)也利于DNA 段的充分溶解。
  將離心柱置于新的.5 ml 離心管中。向純化柱的處,懸空滴加30-00 µl 溶液Eluent  (60℃預(yù)熱),靜置2min 。2,000 rpm  離心min,管底即為目的DNA 段。貯存于-20℃。
   ● 溶液Eluent 可用無菌雙蒸水代替,但其pH 需為8.0-8.5,加入體積視DNA 目的段的多少、用戶對目的濃度要求而定。
   ● 對溶液Eluent 60℃預(yù)熱,會提高提取DNA 目的段的產(chǎn)量。

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